21 SIEMBRA EN MEDIO LIQUIDO — Transcript

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Speaker A
La Universidad Nacional Autónoma de México, a través de la Facultad de Química y de su Laboratorio de Microbiología Experimental,
00:10
Speaker A
presenta.
00:13
Speaker A
Siembra en medio líquido.
00:20
Speaker A
Esta técnica se emplea para preparar dilusiones, enriquecer un inóculo, homogeneizarlo o bien para cuantificar.
00:37
Speaker A
Un mechero.
00:40
Speaker A
El asa bacteriológica.
00:42
Speaker A
O un hisopo.
00:45
Speaker A
O pipetas, ya sea serológica, Pasteur o automática.
00:53
Speaker A
Tubos o matraces con el medio de cultivo líquido o con solución salina.
00:59
Speaker A
Y una muestra líquida.
01:47
Speaker A
Para efectuar la transferencia de la alícuota, empleamos dispositivos estériles.
01:54
Speaker A
Y realizamos todas las manipulaciones en una zona aséptica.
02:07
Speaker A
Para llevar a cabo la transferencia con el asa, primero debemos esterilizarla y dejarla enfriar dentro de la zona aséptica.
02:17
Speaker A
Tomamos el tubo que contiene la muestra líquida, lo homogeneizamos y destapamos cerca del mechero.
02:25
Speaker A
Flameamos la boca del tubo, introducimos el asa hasta sumergirla en la muestra y la sacamos de manera vertical, evitando tocar las paredes del mismo.
02:38
Speaker A
Teniendo cuidado de que en el arillo se mantenga una película del inóculo.
03:25
Speaker A
Manteniendo el asa en el área aséptica, tapamos el tubo.
03:32
Speaker A
En zona aséptica, destapamos el matraz donde colocaremos el inóculo, flameamos la boca e introducimos el asa con el inóculo, el que dispensaremos en el medio agitando el asa suavemente.
03:53
Speaker A
Por último, sacamos el asa, flameamos la boca del matraz, lo tapamos y esterilizamos el asa.
04:16
Speaker A
Para realizar la transferencia con hisopo, este debe estar previamente estéril.
04:23
Speaker A
Sacamos el hisopo en condiciones de asepsia.
05:06
Speaker A
Sujetamos el tubo que contiene la muestra y lo destapamos asépticamente.
05:13
Speaker A
Flameamos la boca e introducimos el hisopo y lo impregnamos con la muestra.
05:19
Speaker A
Eliminamos el exceso de inóculo, presionándolo contra la pared interna del tubo.
05:26
Speaker A
Sacamos el hisopo y tapamos el tubo.
05:34
Speaker A
Sujetamos el tubo donde colocaremos el inóculo.
05:39
Speaker A
Lo abrimos en condiciones asépticas.
05:44
Speaker A
Introducimos el hisopo y lo agitamos dentro del medio.
05:52
Speaker A
Quitamos el exceso de líquido en el hisopo.
05:56
Speaker A
Lo retiramos y tapamos el recipiente.
06:00
Speaker A
Por último, colocamos el hisopo en un contenedor de residuos biológico infecciosos para su posterior esterilización.
06:57
Speaker A
Antes de tomar la muestra, desenvolvemos la pipeta o la sacamos del cilindro de esterilización.
07:04
Speaker A
Le colocamos un bulbo o propipeta y la mantenemos cerca del mechero.
07:13
Speaker A
En condiciones asépticas, abrimos el recipiente que contiene la muestra, introducimos la pipeta y succionamos el volumen de inóculo deseado.
07:24
Speaker A
Retiramos la pipeta del recipiente, la mantenemos en posición vertical en el área de asepsia, flameamos la boca del recipiente y lo tapamos.
07:35
Speaker A
Sujetamos el recipiente donde colocaremos el inóculo.
07:40
Speaker A
Lo acercamos al mechero.
07:43
Speaker A
Destapamos, flameamos la boca, introducimos la pipeta y liberamos el inóculo.
08:28
Speaker A
Recuerda que esta operación también se realiza en condiciones asépticas.
08:33
Speaker A
Después, flameamos la boca del recipiente y lo tapamos.
08:37
Speaker A
Por último, colocamos la pipeta en un recipiente con desinfectante.
08:49
Speaker A
La transferencia con pipeta automática es similar a la descrita anteriormente, pero en este caso, lo que debemos mantener en la zona aséptica es la punta intercambiable, ya que esta es la que entrará en contacto con la muestra y el medio de cultivo a inocular.
09:14
Speaker A
Los puntos críticos para efectuar una transferencia adecuada son:
09:18
Speaker A
Mantener en todo momento el dispositivo empleado dentro de la zona aséptica.
10:03
Speaker A
Evitar tocar con las manos la punta de la pipeta serológica, Pasteur o la intercambiable, o entre en contacto con material no estéril.
10:11
Speaker A
Sostener la pipeta firmemente para evitar que esta oscile y salga de la zona de asepsia o entre en contacto con material no estéril.
10:27
Speaker A
Es importante que al iniciar el trabajo, tengamos organizado todo el material que utilizaremos, incluyendo un recipiente con solución desinfectante para el desecho de las pipetas o puntas.
10:44
Speaker A
Como hemos visto, para transferir inóculos líquidos a medios de cultivo líquidos,
10:52
Speaker A
podemos utilizar asa bacteriológica.
10:56
Speaker A
Hisopo.
10:58
Speaker A
Pipeta Pasteur.
11:36
Speaker A
Pipeta serológica o pipeta automática.

Frequently Asked Questions

¿Para qué se utiliza la técnica de siembra en medio líquido?

Esta técnica se emplea para preparar diluciones, enriquecer un inóculo, homogeneizarlo o para cuantificar. Es fundamental en el Laboratorio de Microbiología Experimental de la Facultad de Química de la UNAM.

¿Cuáles son los materiales necesarios para realizar una siembra en medio líquido?

Se necesita un mechero, asa bacteriológica o hisopo, o pipetas (serológica, Pasteur o automática). También se requieren tubos o matraces con medio de cultivo líquido o solución salina, y una muestra líquida.

¿Cómo se realiza la transferencia de una muestra con un hisopo en la siembra en medio líquido?

El hisopo estéril se introduce en la muestra líquida para impregnarlo, eliminando el exceso de inóculo. Luego, se introduce en el medio de cultivo líquido, se agita suavemente y se retira el hisopo, el cual se desecha en un contenedor de residuos biológico infecciosos.

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